在基因治療、細胞轉(zhuǎn)染等眾多生物醫(yī)學(xué)研究中，PEI轉(zhuǎn)染試劑發(fā)揮著關(guān)鍵作用。以下是它的詳細配制步驟。
材料和試劑準備
在進行
PEI轉(zhuǎn)染試劑的配制前，需要準備好相關(guān)材料和試劑。包括高純度的線性PEI粉末、合適的緩沖液（如HEPES緩沖液）、核酸樣品（如質(zhì)粒DNA）以及適量的水等。
第一步：配制PEI溶液
稱取適量的線性PEI粉末，通常根據(jù)所需濃度和轉(zhuǎn)染體系來確定具體用量。一般來說，可將0.5 - 1 g的PEI粉末溶解于適量的無水乙醇中（例如5 - 10 mL），攪拌至全部溶解，得到PEI乙醇溶液。注意要在通風(fēng)良好的環(huán)境下操作，因為乙醇具有一定的揮發(fā)性。
第二步：脫醇處理
將PEI乙醇溶液緩慢加入到大量預(yù)冷的去離子水中（例如100 - 200 mL），邊加邊攪拌，使乙醇充分揮發(fā)，得到無醇的PEI溶液。這一步非常關(guān)鍵，因為乙醇可能會對后續(xù)的細胞產(chǎn)生毒害作用。
第三步：調(diào)節(jié)pH值
使用pH計測量PEI溶液的pH值，并將其調(diào)節(jié)至合適的范圍（通常在7.0 - 7.5之間）。可以使用1 M的NaOH或HCl溶液進行滴定調(diào)節(jié)，同時不斷攪拌溶液，使pH值穩(wěn)定在目標范圍內(nèi)。
第四步：確定轉(zhuǎn)染濃度
根據(jù)轉(zhuǎn)染實驗的具體需求，進一步稀釋PEI溶液至合適的濃度。一般來說，常用的轉(zhuǎn)染濃度范圍為1 - 5 μg/mL。
第五步：加入核酸樣品
在含有適量細胞培養(yǎng)液的細胞培養(yǎng)板中，加入準備好的核酸樣品（如質(zhì)粒DNA），然后緩慢加入配制好的PEI溶液，使核酸與PEI按照適當(dāng)?shù)哪柋龋ㄍǔ?:3 - 1:5）混合，輕輕混勻。
第六步：靜置孵育
將轉(zhuǎn)染混合體系放置在37℃、5% CO?的培養(yǎng)箱中靜置孵育一段時間（一般為4 - 6小時），使PEI與核酸充分結(jié)合并進入細胞。
第七步：更換培養(yǎng)液
孵育結(jié)束后，小心地吸出舊的培養(yǎng)液，加入新鮮的全部培養(yǎng)液，繼續(xù)培養(yǎng)細胞。
通過嚴格按照上述步驟進行PEI轉(zhuǎn)染試劑的配制，可提高轉(zhuǎn)染效率，為后續(xù)的基因治療和細胞研究提供有力保障。
